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Ecosistemas 19 (1). Enero 2010. http://www.revistaecosistemas.net/articulo.asp?Id=627 INVESTIGACIÓN |
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Asimilación de carbono, eficiencia de uso de agua y actividad fotoquímica en xerófitas de ecosistemas semiáridos de Venezuela W. Tezara 1, R. Urich 1, I. Coronel 1, O. Marín 1, A. Herrera 1 |
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Tezara, W., Urich, R., Coronel, I., Marín, O., Herrera, A. (2010). Asimilación de carbono, eficiencia de uso de agua y actividad fotoquímica en xerófitas de ecosistemas semiáridos de Venezuela. Ecosistemas 19(1):67-78. Palabras claves: potencial hídrico, balance de carbono, composición isotópica de carbono, xerófitas, fluorescencia. Tezara, W., Urich, R., Coronel, I., Marín, O., Herrera, A. (2010). Carbon assimilation, water use efficiency and photochemical activity in xerophytes from semiarid ecosystems of Venezuela. Ecosistemas 19(1):67-78. |
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Introducción Uno de los posibles escenarios derivados de los estudios del cambio climático global es que el incremento en las concentraciones ambientales de CO2 (Ca) causará un aumento significativo de la temperatura del planeta, lo que podría alterar los patrones de nubosidad y precipitación, causando la aparición de nuevas zonas áridas o desertificadas a nivel mundial (IPCC, 2007; Lawlor, 2001). Además de limitar la productividad vegetal en muchos ecosistemas terrestres, el déficit hídrico (DH) podría influenciar la distribución y abundancia de muchas especies vegetales, aun cuando las plantas se encuentren bien adaptadas a condiciones áridas (Schulze et al., 1987). La información sobre las limitaciones fisiológicas de la fotosíntesis en respuesta a diferentes intensidades de DH y su recuperación, es insuficiente. Además, conocer la respuesta de las plantas a la sequía podría tener un papel importante en la protección de la vegetación natural en áreas donde la disponibilidad hídrica es limitante. En general, el DH causa respuestas en las plantas que involucran una interacción compleja de procesos físicos y metabólicos en células, tejidos y órganos (Kramer y Boyer, 1995; Lawlor y Cornic, 2002). Estas respuestas son causadas en la mayoría de los casos por alteraciones en la morfología y fisiología celular, lo que trae como resultado la inhibición del crecimiento y del metabolismo fotosintético (Saibo et al., 2009). La respuesta fotosintética al DH es altamente compleja e involucra la interrelación de limitaciones que tienen lugar en diferentes partes de la planta y a diferentes escalas temporales. La intensidad, duración y tasa de imposición del estrés influencia la respuesta de la planta, siendo estos factores determinantes para saber si la mitigación de los procesos está o no asociada con la aclimatación (Chaves et al., 2009). El DH afecta directamente la transpiración (E) restringiendo la pérdida de agua de los tejidos más hidratados, contribuyendo al mantenimiento del estado hídrico de la planta y aumentando la EUA, e inevitablemente disminuye la A, causando una inhibición del crecimiento y de la expansión foliar. La EUA varía entre plantas que crecen en diferentes hábitats, considerándose la optimización de la asimilación de carbono y la minimización de la pérdida de agua como una característica adaptativa (Ehleringer, 1983). Al igual que ocurre con las plantas que habitan en ambientes sometidos a inundaciones (ver Herrera et al., 2010; Piedade et al., 2010) las plantas que crecen en ambientes semiáridos tropicales presentan mecanismos que les permiten sobrevivir en tales condiciones. Muchas especies xerófitas están sometidas a periodos prolongados de sequía, por lo que deben presentar respuestas fisiológicas que podrían ser consideradas adaptaciones a estas condiciones. Entre las principales adaptaciones observadas están: 1) minimizar la pérdida de agua a través del cierre estomático, disminución del área foliar, baja relación área/volumen de las hojas (algunas veces modificadas en espinas), aumento de la reflectancia foliar debido a una alta densidad de tricomas (Larcher, 2000), movimientos foliares con los que se reduce parcialmente la radiación incidente (Ehleringer y Cooper, 1992) y mecanismos de fotoprotección asociados a ajustes fisiológicos, bioquímicos y morfoanatómicos foliares; 2) maximizar la incorporación de agua a través de cambios en la asignación de asimilados, como por ejemplo, el incremento en la superficie de absorción radical (Jackson et al., 2000), el desarrollo de un sistema radical profundo y/o 3) optimizar la ganancia de carbono en periodos desfavorables gracias a la presencia de tallos fotosintéticos, suculencia, altas EUA, bajos potenciales osmóticos (Ψs), metabolismo ácido de crasuláceas (CAM), etc. El cierre estomático causa una disminución en la concentración intercelular de CO2, Ci (Cornic 2000), ocasionando un ajuste a las nuevas condiciones. Entre los ajustes que se presentan están: 1) una disminución de ΦPSII debido a un incremento de la disipación térmica de energía de excitación; 2) un incremento en la incorporación de O2 (fotorrespiración) con respecto a la incorporación neta de CO2; 3) un descenso en la actividad de dos de las enzimas claves de la fotosíntesis, como son la nitrato reductasa (NR) y la sacarosa fosfato sintetasa (SPS) (Cornic, 1994) y 4) una disminución en la enzima ATP sintetasa lo que trae como consecuencia un descenso en la producción de ATP, limitándose la regeneración de la ribulosa 1,5 bifosfato (RuBP) en el ciclo de Calvin (Tezara et al., 1999; Lawlor y Tezara, 2009). Materiales y métodos
En la figura 1 se muestra la localización de las áreas de estudio en la zona norte costera de Venezuela, caracterizada por poseer un clima mega-térmico, con temperaturas medias entre 27 y 30 °C, precipitaciones erráticas tanto en el espacio como en el tiempo (Díaz, 2001), con un promedio anual menor a los 1000 mm e incidencia de vientos alisios que se desplazan desde el NE y ENE (Medina et al., 2008). Las tasas de evapotranspiración oscilan entre 1600 y 2300 mm con vientos entre 4 y 8 m s-1, radiación total cercana a los 6500 Kwatt/día (Díaz, 2001) y densidad de flujo fotosintético (DFF) muy por encima de los valores saturantes de A para varias especies de la región. Sólo las áreas perpendiculares a los vientos alisios presentan precipitaciones elevadas (Fig.1, Medina et al., 2008). El clima en las áreas de estudio (dunas costeras, matorrales espinosos y bosque secos tropicales) se caracteriza por altas radiaciones y temperaturas y periodos prolongados de baja disponibilidad hídrica.
Estado hídrico de las plantas: El Ψ se midió en cinco hojas de cada especie a las 06:00 h con una cámara de presión (PMS, Corvallis, Oregon, USA). Intercambio gaseoso foliar: Se realizaron medidas instantáneas de A, E, gs y Ci, utilizando un analizador infrarrojo de gases portátil CIRAS 2 (PPSystem, R.U.) por quintuplicado en cada especie. La EUA se calculó como la relación A/E. Las medidas de Amax se realizaron a 385 μmol mol-1 de CO2, 21% de O2, 28 ± 2º C y DFF de 1200 ± 50 μmol m-2 s-1 en hojas adultas bien expandidas entre las 9:00 y 11:00 h. La AD se calculó como el área bajo la curva de la A de al menos tres cursos diarios por especie por temporada. Composición isotópica de carbono (δ13C): Se determinó la δ13C de muestras secas de hojas (n=4) con un espectrómetro de masa en el laboratorio de Ecología y Evolución del Departamento de Ciencias Biológicas, Universidad de Illinois, Chicago. Determinación de la actividad fotoquímica del PSII: La fluorescencia de la clorofila a se midió con un fluorímetro (MiniPAM, Walz, Alemania), siguiendo el protocolo descrito por Genty et al. (1989). Se midió la eficiencia cuántica relativa del fotosistema II (ΦPSII) y el coeficiente de extinción no fotoquímica (NPQ, Bilger y Björkman,1990) a una DFF de 1050 ± 150 μmol m-2 s-1 en seis hojas de diferentes plantas entre las 9:00 y 11.00 h. Análisis estadístico Se utilizó el paquete estadístico Statistica 5.5 para realizar el análisis de varianza de dos vías (ANOVA, con un nivel de significancia de p<0,05) y pruebas a posteriori de diferencia entre medias (LSD). Se realizó análisis de regresión lineal entre algunos de los parámetros medidos con el programa Sigmaplot 11.0. Resultados
Los mayores valores de A y gs se registraron en la temporada de lluvia y se observó una respuesta diferencial a la sequía dependiendo de la forma de vida (p< 0.05), siendo los arbustos caducifolios los más afectados (disminución de 59 % en A y 76% en gs, Fig. 3). En la temporada de lluvias se observaron las mayores A en los arbustos siempreverdes (máxima, 22 μmol m-2 s-1) y las menores en los arbustos caducifolios (mínima, 6 μmol m-2 s-1). La gs varió entre 0.14 y 0.3 mol m-2 s-1 en lluvia y entre 0.05 y 0.16 mol m-2 s-1 en sequía (Fig. 3). Los arbustos caducifolios redujeron su gs en un 76 %, mientras que los árboles semi-caducifolios mostraron valores intermedios de gs que no variaron con la temporada.
Se encontró una alta relación lineal entre A y gs en todas las formas de vida; las variaciones en la A fueron explicadas en un 70 % por los cambios de gs (Fig. 4).
En 11 especies de diferentes formas de vida se observó una alta correlación lineal entre Amax y la AD (Fig. 5). Las variaciones observadas en AD fueron explicadas en un 82 % por cambios en la Amax. Los mayores valores fueron observados en A. crucis (C4) en lluvia y los menores en J. gossypifolia (C3) durante la sequía. Los valores de Amax inferiores a 10 μmol m-2 s-1 corresponden a plantas estresadas por el DH.
La EUA varió de 2.3 a 4.7 mmol mol-1 en la temporada de lluvias, observándose una disminución promedio del 35% con la sequía en las formas de vida caducifolias, mientras que en los árboles y arbustos siempreverdes permaneció constante e incrementó en un 43% en las hierbas (Tabla 2, efecto de forma de vida no significativo, efecto de temporada p=0.125). En lluvia, el δ13C varió entre -20.9 ‰ (hierbas), -26.8‰ (arbustos siempreverdes) y -28.9‰ (promedio de las otras formas de vida). En sequía el δ13C incrementó en todas las formas de vida (Tabla 2, efecto de forma de vida p=0.04, efecto de temporada no significativo).
El ΦPSII fue similar entre las diferentes formas de vida en la temporada de lluvias (0.49 en promedio), mientras que en sequía sufrió una reducción de 24, 45, 16 y 65 % en árboles siempreverdes, árboles semicaducifolios, arbustos siempreverdes y arbustos caducifolios, respectivamente, sin cambios en las hierbas (Tabla 3, efecto de forma de vida p=0.02 y efecto de temporada p=0.01). El NPQ aumentó en todas las formas de vida salvo en los arbustos siempreverdes y las hierbas, observándose la mayor disipación no fotoquímica de energía en los arbustos caducifolios (Tabla 3 efecto de forma de vida p=0.004 y efecto de temporada p=0.0008 e interacción p=0,02).
Discusión En todas las formas de vida el Ψ disminuyó con la sequía a valores similares a los reportados en estudios previos (Tezara et al., 1998; 2003; 2005). En promedio, el Ψ en sequía para todas las formas de vida fue de -2,5 MPa. La reducción del Ψ con la sequía en los arbustos caducifolios y hierbas puede ser resultado de un sistema radical menos profundo en comparación con los árboles y arbustos siempreverdes y árboles caducifolios, los cuales probablemente explotan horizontes más profundos. En un estudio comparativo entre especies siempreverdes y caducifolias de un bosque seco tropical, las siempreverdes mostraron menores potenciales osmóticos y paredes más rígidas que las caducifolias (Sobrado, 1986). Los menores valores de Ψ durante el período seco en las hierbas fueron el resultado del desarrollo de ajuste osmótico en A. crucis y L. nodosum (0.8 MPa, Ríos, 1993 y 0.7 MPa, Tezara et al., 2003 respectivamente). Valores muy por debajo de -5 MPa han sido reportados en arbustos caducifolios de ecosistemas secos (Smith y Nobel, 1986). Estos resultados indican que el mantenimiento del estado hídrico de las diferentes formas de vida estará influenciado por el tipo de sistema radical, presencia o no de ajuste osmótico y control estomático, entre otros. Agradecimientos El Consejo de Desarrollo Científico de la Universidad Central de Venezuela financió esta investigación con las subvenciones CDCH PI 03-33-5383-2006 y CDCH PI 03.5733.2007/2. Bibliografia Bilger, W., Björkman, O. 1990. Role of the xanthophyll cycle in photoprotection elucidated by measurements of light-induced absorbance changes, fluorescence and photosynthesis in leaves of Hedera canariensis. Photosynthesis Research 25:173-185 Chaves, M.M., Flexas, J., Pinheiro C. 2009. Photosynthesis under drought and salt stress: regulation mechanisms from whole plant to cell. Annals of Botany 103:551-560. 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